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nouvelles de l'entreprise La méthode de détermination de résistance de moule de film de peinture

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La méthode de détermination de résistance de moule de film de peinture
Dernières nouvelles de l'entreprise La méthode de détermination de résistance de moule de film de peinture

Cette méthode simule principalement les conditions environnementaux de la croissance de moule en nature, et les conceptions ont accéléré des essais selon les caractéristiques physiologiques de la croissance de moule. Inoculez les spores de moule sur la surface de spécimen, puis endroit le spécimen en état environnemental approprié à la croissance de moule, et observez la croissance du moule sur la surface de spécimen. La résistance de moule du film de peinture est évaluée selon le degré de moule sur la surface de spécimen.

01.Scope et description

Cette norme s'applique à la détermination de la résistance de moule du film architectural de peinture, et la détermination de la résistance de moule d'autres types de film de peinture peut être mentionnée dans cette norme.

 

02. Instruments et matériaux

Incubateurs thermostatiques et d'humidité, incubateurs, pots à haute pression de stérilisation de vapeur, boîtes sèches de stérilisation par la chaleur, équilibres, compteurs pH, centrifugeuses, armoires de sécurité biologique, microscopes, réfrigérateurs, pulvérisateurs, cartouches de mesure, plats de comptage de cellules de sang, bouteilles triangulaires, anneaux de vaccination, perles en verre, entonnoirs en verre, papier filtre de fibre, bechers, tubes de verre sans couleur, micromètres, micromètres.

03. Méthode de mesure

Inspection aseptique liquide de réservoir
(méthode d'essai de microfloid de mikrocount®).

Immergez les comprimés dans le liquide à l'essai pendant quelques secondes. Des liquides peuvent également être employés pour rincer directement sur la surface du microflotail. Cultivez les comprimés dans un tube protecteur serré d'emballage original, examinez-les avec une boîte thermostatique d'humidité, et cultivez-les pendant 2-5 jours à 30/25 degré C pour vérifier si l'échantillon est souillé avec des bactéries ou des champignons. La limite de détection pour cette méthode est approximativement 1CFU/cm2 ou 100cfu/mL.

- ® TPC (agar nutritionnel) de mikrocount : utilisé pour détecter des bactéries. La température de 30℃ convient à la croissance bactérienne. Habituellement 1-2 jours de culture est suffisants pour que les bactéries se développent.

- duo de mikrocount® (agar rouge de tigre) : pour détecter des champignons, y compris la levure et le moule. La température de 25℃ convient à la croissance de la levure et du moule. Habituellement 2 ou 3 jours de culture est suffisants pour la croissance de levure, 5-7 jours pour la culture est assez pour la croissance fongique.

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Observez si la surface de culture a les bactéries et le champignon. S'il y a des bactéries, la stérilisation UV est effectuée et retestée.

 

Essai fongueux de membrane sèche.

(Essai GB/T 1741 de moule).

1, peinture stérile témoin selon le procédé de construction de produit pour le plat d'électrophorèse. Le modèle exige un plat en aluminium de place-taille de 5cm x de 5cm. Chaque échantillon a 4-6 modèles qui sont maintenus dans un environnement de la température constante et d'humidité pendant plus de 16 heures.

 

2, selon la norme de GB/T 1741 auront besoin de 9 tensions expérimentales dans l'armoire de biosecurity avec les spores aseptiques de moule de sélection d'anneau d'inoculation, inoculées sur le milieu de pomme de terre-glucose (PDA), dans 28 degrés de C aux conditions de 30 degrés C pour cultiver 7d à 14d, quand la surface du milieu est pleine des spores de moule, ajoutent l'eau 1mL stérile, dans l'armoire de biosecurity avec l'anneau aseptique d'inoculation en conditions de fonctionnement stériles éraflent doucement des spores de moule sur la surface de la culture de moule, pour faire la suspension de spore de moule.

 

3, le modèle d'essai à examiner sous la lumière UV 30-60min irradié, stérilisation, pour empêcher l'impact de la pollution provoqué par l'environnement externe. Versez au sujet de 20mL de milieu nutritif d'agar de sel dans une boîte de Pétri stérile, et après que le milieu solidifie, 3 échantillons d'essai et 3 échantillons témoins sont placés au centre de la surface de la boîte de Pétri contenant le milieu dans des conditions stériles. Appliquez-vous 0.41mL à 0.61mL a mélangé des spores de moule sur la surface de chaque échantillon d'essai et la surface d'échantillon et moyenne témoin à un pulvérisateur stérile pour humidifier la surface entière d'échantillon d'essai et témoin et la surface moyenne. Les échantillons inoculés d'essai et des échantillons témoins ont été placés dans une température constante et l'incubateur d'humidité, à une température de 25 degrés de C à 30 degrés de C, hygrométrie n'est pas moins de 85% des conditions de la culture 7d après que l'examen visuel de la croissance de moule d'échantillon témoin, 3 échantillons témoins devrait avoir la croissance de moule, autrement l'essai est invalide, devrait être retesté. Si la croissance de moule est évidente sur chaque échantillon témoin, les résultats sont évalués après l'échantillon d'essai de culture et l'échantillon témoin ont été 28d. (La période de formation peut être prolongée à 56d comme convenu par les parties concernées).

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